УДОСКОНАЛЕННЯ АМПЕРОМЕТРИЧНОГО БІОСЕНCОРА НА ОСНОВІ ЛАККАЗИ З НАНОЧАСТИНКАМИ ДІОКСИДУ ТИТАНУ
DOI:
https://doi.org/10.32782/2450-8640.2021.1.4Ключові слова:
TiO2, Nafion®, лакказа, ABTS, амперометричий біосенсорАнотація
Розробка нових підходів до моніторингу небезпечних речовин у навколишньому середовищі є актуальною проблемою сучасності для покращення якості життя людей. З цієї точки зору електрохімічним біосенсорам приділяється підвищена увага через їхню високу специфічність, чутливість, надійність, портативність і простоту в експлуатації. У наш час спостерігається швидке зростання використання напівпровідникових наночастинок (НЧ) у виготовленні електрохімічних сенсорів, стимульованих унікальними властивостями таких наноматеріалів, як велика площа поверхні та хороша біосумісність. Біосенсори на основі лаккази, модифіковані НЧ, є дуже перспективними для кількісного визначення фенольних сполук з хорошою надійністю та точністю. Тут ми описали конструкцію біосенсора для аналізу фенолів на основі лаккази в поєднанні з комерційними наночастинками TiO2, включеними у полімер Nafion®. Показано, що модифікація графітового стрижневого електроду TiO2 і лакказою, вбудованими у плівку Nafion, значно покращує дві основні характеристики сенсора: максимальну реакцію біосенсора при насичення субстрату (вдвічі) і чутливість (у три рази) порівняно з контрольними біоелектродами (без використання TiO2). Підвищення чутливості біосенсора робить його більш перспективним для точного аналізу токсичних фенолів реальних зразків, де їх вміст дуже низький (наприклад, питної води). Однак, незважаючи на те, що аналіз ABTS як модельного субстрату з розробленим біосенсором був успішним, справжньою мотивацією дослідження було створення нової біосенсорної платформи з використанням TiO2 (амфотерного напівпровідника) та полімеру Nafion для ефективної іммобілізації ферменту. Виходячи з отриманих результатів, наступним кроком буде легування TiO2 різним вмістом сульфуру, конструкція біоелектродів та їх випробування різними субстратами лаккази (ABTS, катехол, фенол) та реальними зразками стічних вод. Ми вважаємо, що наявність сульфуру в TiO2 повинно впливати на кластери міді та залишки цистеїну, впливаючи на активний центр лаккази, що призводитиме до збільшення спорідненості утвореного біонанокомпозиту до цільових аналітів (феноли). Ця більш складна біосенсорна система зараз знаходиться у дослідженні, і результати будуть опубліковані в іншому місці незабаром. Сконструйовані біоелектроди продемонстрували покращення експлуатаційних параметрів у порівнянні з біоелектродами без використання TiO2, що робить їх більш перспективними для аналізу фенолів у реальних зразках стічних та підземних вод.
Посилання
Rodríguez-Delgado M., Alemán-Nava G., Rodríguez-Delgado J., Dieck-Assad G., Martínez-Chapa S., Barceló D., Parra R. Laccase-based biosensors for detection of phenolic compounds. Trends Anal. Chem. 2015. Vol. 74. P. 21–45, https://doi.org/10.1016/j.trac.2015.05.008
Yashas S., Shivakumara B., Udayashankara T., Krishna B. Laccase biosensor: Green technique for quantification of phenols in wastewater (a review). Oriental Journal of Chemistry. 2018. Vol. 34. P. 631–637, https://doi.org/10.13005/ojc/340204
Jones S., Solomon E. Electron transfer and reaction mechanism of laccases. Cellular and Molecular Life Sciences. 2015. Vol. 72. P. 869–883, https://doi.org/10.1007/s00018-014-1826-6
Kavetskyy T., Smutok O., Demkiv O., Maťko I., Švajdlenková H., Šauša O., Novák I., Berek D., Čechová K., Pecz M., Nykolaishyn-Dytso O., Wojnarowska-Nowak R., Broda D., Gonchar M., Zgardzińska B. Microporous carbon fibers as electroconductive immobilization matrixes: Effect of their structure on operational parameters of laccase-based amperometric biosensor. Mater. Sci. Eng. C. 2020. Vol. 109. P. 110570, https://doi.org/10.1016/j.msec.2019.110570
Kavetskyy T., Stasyuk N., Smutok O., Demkiv O., Kukhazh Y., Hoivanovych N., Boev V., Ilcheva V., Petkova T., Gonchar M. Improvement of amperometric laccase biosensor using enzyme-immobilized gold nanoparticles coupling with ureasil polymer as a host matrix. Gold Bull. 2019. Vol. 52. P. 79–85, https://doi.org/10.1007/s13404-019-00255-z
Salvo-Comino C., González-Gil A., Rodriguez-Valentin J., Garcia-Hernandez C., Martin-Pedrosa F., Garcia-Cabezon C., Rodriguez-Mendez M.L. Biosensors platform based on chitosan/AuNPs/phthalocyanine composite films for the electrochemical detection of catechol. the role of the surface structure. Sensors (Basel). 2020. Vol. 20. P. 2152, https://doi.org/10.3390/s20072152
Almeida I., Henriques F., Carvalho M., Viana A. Carbon disulfide mediated self-assembly of Laccase and iron oxide nanoparticles on gold surfaces for biosensing applications. J. Colloid Interface Sci. 2017. Vol. 485. P. 242–250, https://doi.org/10.1016/j.jcis.2016.09.042
Lekshmi I.C., Rudra I., Pillai R., Sarika C., Shivakumar M.S., Shivakumara C., Konwar S.B., Narasimhamurthy B. Enhanced catechol biosensing on metal oxide nanocrystal sensitized graphite nanoelectrodes through preferential molecular adsorption, Journal of Electroanalytical Chemistry. 2020. Vol. 867. P. 114190, https://doi.org/10.1016/ j.jelechem.2020.114190.
Zhang, Y.; Li, X.; Li, D.; Wei, Q. A laccase based biosensor on AuNPs-MoS2 modified glassy carbon electrode for catechol detection. Colloids Surf. B Biointerfaces. 2020. Vol. 186. P. 110683, https://doi.org/10.1016/j.colsurfb.2019.110683
Pillai R., Preetha S., Narasimhamurthy B., Lekshmi I.C. Biosensing of catechol via amperometry using laccase immobilized nickel oxide/graphite modified screen-printed electrodes. Materials Today: Proceedings. 2022, in press, https://doi.org/10.1016/j.matpr.2022.03.708
Agnihotri A.S., Varghese A., Nidhin M. Transition metal oxides in electrochemical and bio sensing: A state-of-art review. Applied Surface Science Advances. 2021. Vol. 4. P. 100072, https://doi.org/10.1016/j.apsadv.2021.100072
Kavetskyy T., Smutok O., Gonchar M., Demkiv O., Klepach H., Kukhazh Yu., Šauša O., Petkova T., Boev V., Ilcheva V., Petkov P., Stepanov A. Laccase-based functional biosensors with host organic-inorganic ureasil-based polymer matrix. Journal of Applied Polymer Science. 2017. Vol. 134. P. 45278, https://doi.org/10.1002/app.45278
Kavetskyy T., Smutok O., Demkiv O., Kasetaite Si., Ostrauskaite J., Švajdlenkova H., Šauša O., Zubrytska K., Hoivanovych N., Gonchar M. Dependence of operational parameters of laccase-based biosensors on structure of photocross-linked polymers as holding matrixes. European Polymer Journal. 2019. Vol. 115. P. 391–398, https://doi.org/10.1016%2Fj.eurpolymj.2019.03.056
Kadam A.A., Saratale G.D., Ghodake G.S., Saratale R.G., Shahzad A., Magotra V.K., Kumar M., Palem R.R., Sung J.-S. Recent advances in the development of laccase-based biosensors via nano-immobilization techniques. Chemosensors. 2021. Vol. 10. P. 58, https://doi.org/10.3390/chemosensors10020058
Li H., Hu X., Zhu H., Zang Y., Xue H. Amperometric phenol biosensor based on a new immobilization matrix: polypyrrole nanotubes derived from methyl orange as dopant. Int. J. Electrochem. Sci. 2017. Vol. 12. P. 6714–6728, https://doi.org/10.20964/2017.07.80
Cevher Ş.C., Bekmezci S.A., Soylemez S., Udum Y.A., Toppare L., Çırpan A. Indenoquinoxalinone based conjugated polymer substrate for laccase biosensor. Materials Chemistry and Physics. 2021. Vol. 257 P. 123788, https://doi.org/10.1016/ j.matchemphys.2020.123788